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細胞接收后的處理:
1)收到細胞后,75%酒精瓶壁將T25瓶置于37℃培養(yǎng)箱放置約2-3h,若發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)瓶破損、有液溢出及細胞有污染,請拍照后及時聯(lián)系我們。
2)請在4或5X顯微鏡下確認細胞狀態(tài),同時給剛收到的細胞拍照(10×,20×)各2-3張以及培養(yǎng)瓶外觀照片一張留存,作為售后時收到時細胞狀態(tài)的依據。
3)貼壁細胞:細胞在37℃培養(yǎng)箱中放置2-3h,顯微鏡下觀察細胞的生長和貼壁情況,有些貼壁細胞在快遞運送過程中會因振動脫落和脫落后成團的情況。若鏡下觀察細胞的生長密度若在60%以下,可去除培養(yǎng)瓶中灌液培養(yǎng)基(若有未貼壁的細胞需要離心回收,重懸打入到原培養(yǎng)瓶中),加入新配制的完全培養(yǎng)基6-8mL,放到細胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。若細胞生長密度達70%-80%以上,可以對細胞進行傳代處理。傳代過程中,若因運輸振動脫落的細胞需要離心回收。
4)備注:運輸用的培養(yǎng)基(灌液培養(yǎng)基)不能再用來培養(yǎng)細胞,請換用按照說明書細胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基來培養(yǎng)細胞。收到細胞后次傳代建議T25培養(yǎng)瓶1:2傳代。
英文簡稱
規(guī)格
貨號
DLD-1:DLD1
1×106
P-X703
產品詳情:
生長特性 貼壁細胞
細胞形態(tài) 上皮細胞樣
凍存條件
凍存液:55% 基礎培養(yǎng)基+40%FBS+5%DMSO
溫度:液氮
培養(yǎng)方案A(默認)
生長培養(yǎng)基:
RPMI-1640+10% FBS+1% P/S
培養(yǎng)條件:
氣相:空氣,95%;CO2,5%, 溫度:37℃
推薦傳代比例 1:3-1:4
推薦換液頻率 2-3次/周
參考資料(來源文獻)
背景描述 DLD-1細胞是由D·L·Dexter和其同事于1977-1979年分離的兩株結直腸腺癌細胞株中的一株。在ATCC和其它地方進行的DNA指紋鑒定和染色體組型分析表明DLD-1細胞與HCT-15細胞相似,說明這兩者是來自同一個人的不同克隆。DLD-1細胞和HCT-15細胞的遺傳起源可通過DNA指紋鑒定證實,但染色體組型分析顯示它們缺乏染色體標記一致改變或數(shù)目上一致改變。DLD-1細胞的CSAp陰性(CSAp-),p53抗原表達呈陽性(p53抗原產生了一個C→T點突變導致241位的Ser→Phe)。DLD-1細胞角蛋白過氧化物酶染色陽性,癌基因c-myc、K-ras、H-ras、N-ras、myb、sis和fos的表達呈陽性,癌基因N-myc的表達未做檢測。DLD-1細胞表達腫瘤特異性核基質蛋白CC-2、CC-3、CC-4、CC-5和CC-6。1979年提交到ATCC的DLD-1細胞代數(shù)不明且污染了支原體,其后經過12周多種聯(lián)合培養(yǎng)處理,處理之后每周用Hoechst染色和標準培養(yǎng)法檢測。其后連續(xù)11個月不加培養(yǎng),DLD-1細胞所有的檢測呈陰性。
年齡(性別) 男性
組織來源 結直腸腺癌上皮細胞
細胞類型 腫瘤細胞
腫瘤類型 腸癌細胞
生物等級 BSL-1
倍增時間 ~24-48 hours
致瘤性 Yes, in nude mice (Tumors developed within 21 days at 100% frequency (5/5) in nude mice inoculated subcutaneously with 1×10^7 cells).
抗原表達情況 Blood Type O.The cells are weakly positive for keratins and vimentin.The cells are positive for keratin by immunoperoxidase staining.DLD-1 cells are positive for p53 antigen expression (the p53 antigen produced has a C -> T
基因表達情況 carcinoembryonic antigen (CEA) 0.5 ng/10^6 cells/10 days; colon antigen 3.
保藏機構 ATCC; CCL-221 BCRC; 60132 DSMZ; ACC-278 ECACC; 90102540
干冰運輸及復蘇好存活細胞
(1)1mL凍存管包裝干冰運輸,收到后-80度冰箱保存過夜后轉入液氮或直接復蘇,若發(fā)現(xiàn)干冰已揮發(fā)干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染,請立即與我們聯(lián)系。(2)T25瓶復蘇的存活細胞常溫發(fā)貨,收到后按照細胞接收后的處理方法操作。
一.培養(yǎng)基及培養(yǎng)凍存條件準備:
1)準備DMEM培養(yǎng)基;胎牛血清,10%;雙抗,1%。
2)培養(yǎng)條件:氣相:空氣,95%;二氧化碳,5%。 溫度:37攝氏度,培養(yǎng)箱濕度為70%-80%。
3)凍存液:90%血清,10%DMSO,現(xiàn)用現(xiàn)配。
二.細胞處理:
1)凍存細胞的復蘇::將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入到含4-6mL完全培養(yǎng)基的離心管中混合均勻。在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,完全培養(yǎng)基重懸細胞。然后將細胞懸液加入含6-8ml完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶(或皿)中37℃培養(yǎng)過夜
。天顯微鏡下觀察細胞生長情況和細胞密度。
2)細胞傳代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養(yǎng)。對于貼壁細胞傳代可以參考以下方法:1、棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。
2、加入0.25%(w / v)胰蛋白酶-0.53 mM EDTA于培養(yǎng)瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2分鐘(難消化的細胞可以適當延長消化時間),然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加入3-4ml含10%FBS的培養(yǎng)基來終止消化。
3、輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。將細胞懸液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照說明書要求配置的新的完全培養(yǎng)基以保持細胞的生長活力,后續(xù)傳代根據實際情況按1:2~1:5的比例進行。
3)細胞凍存:收到細胞后建議在培養(yǎng)前3代時凍存一批細胞種子以備后續(xù)實驗使用。下面T25瓶為例:
1、細胞凍存時按照細胞傳代的過程收集消化好的細胞到離心管中,可使用血球計數(shù)板計數(shù),來決定細胞的凍存密度。一般細胞的推薦凍存密度為1×10?~1×10?個活細胞/ml.
2、1000rpm離心3-5min,去掉上清。用配制好的細胞凍存液重懸細胞 ,按每1ml凍存液含1×10?~1×10?個活細胞/ml分配到一個凍存管中將細胞分配到凍存管中,標注好名稱、代數(shù)、日期等信息。
3、將要凍存的細胞置于程序降溫盒中,-80度冰箱中過夜,之后轉入液氮容器中儲存。同時記錄好凍存管在液氮容器中的位置以便后續(xù)查閱和使用。
實驗原理:
公司正在出售的產品:
造血相互作用蛋白PBX抗體 PBXIP1 |
多種凝血因子缺乏蛋白2單克隆抗體 MCFD2 |
整合素αVβ6抗體 Integrin Alpha V + Beta 6 |
鈉鈣交換蛋白2抗體 NCX2 |
富含亮氨酸重復家庭蛋白2抗體 LRCH2 |
胰島素樣生長因子1抗體 IGF 1 |
鈣粘蛋白29抗體 CDHR4 |
亞甲基四氫葉酸還原酶MTHFR抗體 MTHFR |
內皮細胞凝集素HL1抗體 ITLN1 |
泛素樣蛋白Sumo2抗體 Sumo2 |
FITC標記人FOXP3單克隆抗體 human FOXP3/FITC |
緊密連接蛋白14抗體 Claudin 14 |
FSP-1抗體 S100A4 |
5-羥色胺受體1B抗體 5HT1B Receptor |
剪切及多聚腺苷酸化特異性因子6蛋白抗體 CPSF6 |
9號染色體開放閱讀框153抗體 C9orf153 |
DHPR受體蛋白表達ELISA定量檢測試劑盒 |
鐵調節(jié)蛋白1抗體 Aconitase 1 |
細胞色素b5含量測試盒 |
突觸融合蛋白1A/1B抗體 Syntaxin 1A + Syntaxin 1B |
1摩爾 TRIS pH7.5分子生物級溶液 |
RBMS2蛋白抗體 RBMS2 |
小鼠蛋白聚糖4(PRG4)elisa檢測試劑盒 |
SMAD8蛋白抗體 SMAD8 |
人白介素-5(IL-5)elisa檢測試劑盒 |
小鼠血小板/內皮細胞粘附分子-1(PECAM-1/CD31)elisa檢測試劑盒 |
/酵母磷脂酶D2(Phospholipase D2)活性比色法定量檢測試劑盒 |
DLD-1人結直腸腺癌細胞大鼠可溶性細胞間粘附分子1(sICAM-1)elisa檢測試劑盒 |
大鼠E選擇素(E-Sel)elisa檢測試劑盒 |
犬表達于SiSo細胞系的受體結合型腫瘤抗原(EBAG9)elisa分析檢測試劑盒 |
小鼠可溶性血栓調節(jié)蛋白(sTM)elisa檢測試劑盒 |
組織醛縮酶(ADOLASE)活性比色法定量檢測試劑盒 |
實驗步驟:
1 將目的基因構建到合適的慢病毒載體上,利用293T細胞進行慢病毒包裝,獲得含目的基因的慢病毒;
2 轉染前24 h進行細胞鋪板,轉染時細胞密度控制在80%左右;
3 天加入適量病毒懸液感染細胞,并置于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中孵育;
4 24 h后用新鮮培養(yǎng)基替換含有病毒的培養(yǎng)基,并繼續(xù)培養(yǎng);
5 在轉染3-4天后開始加藥篩選培養(yǎng),直至顯微鏡下觀察熒光細胞比例為100%,獲得穩(wěn)轉細胞系。