1.  固相載體

可溶性抗原或抗體吸附于固相載體而成為不溶形式，這是進(jìn)行酶標(biāo)記測定的基本條件。許多物質(zhì)可作為固相載體，如纖維素、交聯(lián)右旋糖苷、瓊脂糖珠、聚丙烯、聚苯乙烯、聚乙烯及聚氯乙烯等等。但在ELISA中*常用的是聚苯乙烯或聚氯乙烯微量反應(yīng)板及塑料管。

由于微量反應(yīng)板所用試劑量少，操作方便，適合于大規(guī)模應(yīng)用。國產(chǎn)聚苯乙烯微量反應(yīng)板（上海塑料三廠出品）目前已大量應(yīng)用于ELISA測定，并且獲得了滿意的結(jié)果。但每批微量反應(yīng)板對(duì)抗原或抗體蛋白質(zhì)的吸附性能是有顯著差別的。實(shí)驗(yàn)證明，吸附效果似乎與塑料的類型及其表面性質(zhì)有關(guān)。特別是塑料制品在加工過程中因工藝不同或受其他因素的影響而造成吸附性能的極大差異，甚至完全喪失吸附能力。

因此，對(duì)每批制品在使用前，必須經(jīng)過實(shí)驗(yàn)室鑒定，鑒定的方法和標(biāo)準(zhǔn)是對(duì)每批購置的微量反應(yīng)板或塑料管抽樣，用0.2 ug/ml純化的正常人IgG進(jìn)行包被，經(jīng)洗滌后加酶標(biāo)記抗人球蛋白進(jìn)行反應(yīng)，再經(jīng)孵育洗滌，加底物顯色終止反應(yīng)后，逐孔在酶標(biāo)比色計(jì)中測定其消光值、光密度（OD值）。一般認(rèn)為全板中每兩孔間OD值的誤差不超過10%為合格。如果中間孔與四周孔OD值相差太大，或者反應(yīng)板的這一邊與另一邊凹孔的OD值相差大，均不合格。此外，還要檢查陽性和陰性參考血清OD值是否有明顯差別。一般要求有10倍左右的差異為合格，微量反應(yīng)板或塑料管在使用前并不一定通過特殊處理。用蒸餾水沖洗即可應(yīng)用。

2.  抗原

在ELISA中，包被于固相載體表面的抗原或抗體的來源和制備方法對(duì)試驗(yàn)結(jié)果都有影響。包被所用的抗原必須是可溶性的，而且要qiu是上等和穩(wěn)定的制劑，純度和免yi原性要高。如果不純，由于抗原中所含雜質(zhì)就會(huì)競爭固相載體上的有限位置，降低敏感性和特異性。此外還應(yīng)考慮到制備包被抗原不應(yīng)破壞其免yi學(xué)活性。

經(jīng)試驗(yàn)證明，適用于其他血清學(xué)試驗(yàn)的抗原并非均適合用于ELISA法。因此，對(duì)某一ji病的診斷，必須通過實(shí)踐，才能選出適用的上等抗原。對(duì)大多數(shù)傳染病和寄生蟲病的血清學(xué)診斷中所用的抗原并非要求十分嚴(yán)格，一般能用于補(bǔ)體結(jié)合試驗(yàn)的可溶性抗原均可用于ELISA，例如超聲波抗原、凍融抗原、xi菌的外膜抗原、脂多糖（LPS）、xi菌的外毒su以及用表面活性劑(如SDS)所提取的抗原等，在作ELISA時(shí)，必須要有1-2種試劑、要求純化，但用表面活性劑提取的抗原在包被前必須透析除去表面活性劑，否則就不易吸附到固相載體上去。

此外，對(duì)某些抗原必須進(jìn)行提純，如病du的組織培養(yǎng)和雞胚培養(yǎng)物以及病du接種動(dòng)物的臟器等，它們當(dāng)中存在著許多非抗原的蛋白質(zhì)，必須設(shè)法除去，常用梯度超速離心或親和層析法提純，不經(jīng)提純是不能使用的。在用特異性抗體包被固相載體時(shí)也要提純。用抗原或抗體蛋白包被固相載體時(shí)選擇的濃度要適當(dāng)。如濃度太高，則低效價(jià)抗體可能測不出來，或包被過量形成多層抗原吸附，故在操作過程中可能脫落從而降低敏感性和可重復(fù)性。

用*適稀釋度抗原，包被固相載體不僅經(jīng)濟(jì)，而且可以克服前帶現(xiàn)象。那么用多大濃度抗原進(jìn)行包被*為合適呢？可通過棋盤滴定法進(jìn)行測定，但用單項(xiàng)滴定法更為簡便，其方法是將抗原進(jìn)行一系列稀釋包被微量反應(yīng)板，再用一定稀釋度的陽性參考血清和陰性參考血清進(jìn)行孵育后洗滌，再加酶結(jié)合物進(jìn)行反應(yīng)，經(jīng)孵育洗滌后，加底物溶液顯色，終止反應(yīng)后分別測定OD值，選擇OD值≥1.0的那個(gè)抗原稀釋度為*適包被濃度。一般總是要選擇那個(gè)OD值稍大于1.0，而不選擇小于1.0的抗原濃度。陰性參考血清OD值要求<0.1-0.2。也就是要求陽性參考血清和陰性參考血清的OD值有明顯差別。

抗原包被固相載體除濃度外，對(duì)時(shí)間、溫度、PH均有關(guān)系。溫度高（如37℃、45℃、或56℃），包被時(shí)間可縮短，溫度低可延長包被時(shí)間。但為了方便起見，通常采用4℃包被過夜，可使抗原吸附得更加完全且均勻。在用聚苯乙烯或聚乙烯微量反應(yīng)板或塑料管作固相載體時(shí)，在堿性條件下（如0.1 mol/L、PH9.6碳酸鹽緩沖液稀釋抗原）4℃包被過夜較為合適。但在某些試驗(yàn)中，如用LPS或毒su蛋白包被時(shí)，用PH 7.2-7.4 PBS稀釋才是滿意的。包被特異蛋白質(zhì)的濃度為1-10 ug/ml，而對(duì)某些病原微生物抗原以5-20 ug/ml較為合適，但均應(yīng)通過滴定。